- Код статьи
- 10.31857/S0207401X24110031-1
- DOI
- 10.31857/S0207401X24110031
- Тип публикации
- Статья
- Статус публикации
- Опубликовано
- Авторы
- Том/ Выпуск
- Том 43 / Номер выпуска 11
- Страницы
- 18-30
- Аннотация
- Смешанные фосфониево-иодониевые илиды представляют интерес в качестве регентов для синтеза новых гетероциклических соединений. Ранее показано, что реакции фосфониево-иодониевых илидов под действием света происходят с образованием радикалов. В работе с помощью спиновых ловушек PBN и DMPO исследованы радикалы, образующиеся при фотолизе как самого илида, так и соединений, являющимихся его фрагментами, дифенилиодониевая соль и трифенилфосфин, или участвующие в его реакциях, а именно дихлорметан и фенилацетилен. Полученные результаты подтвердили радикальный механизм фотораспада илида и позволили уточнить состав первичных радикалов, образующихся при фотолизе. Определены ранее неизвестные значения магнитно-резонансных параметров спиновых аддуктов для некоторых радикалов.
- Ключевые слова
- фосфониево-иодониевые илиды фотолиз спиновые ловушки PBN и DMPO радикальные интермедиаты ЭПР-спектроскопия
- Дата публикации
- 14.09.2025
- Год выхода
- 2025
- Всего подписок
- 0
- Всего просмотров
- 1
Библиография
- 1. Baumgartner T. // Acc. Chem. Res. 2014. V. 47. № 5. P. 1613; https://doi.org/10.1021/ar500084b
- 2. Regulska E., Romero-Nieto C. // Dalton Trans. 2018. V. 47. № 31. P. 10344; https://doi.org/10.1039/C8DT01485J
- 3. Duffy M. P., Delaunay W., Bouit P. et al. // Chem. Soc. Rev. 2016. V. 45. № 19. P. 5296; https://doi.org/10.1039/C6CS00257A
- 4. Belyaev A., Chen Y.-T., Su S.-H. et al. // Chem. Commun. 2017. V. 53. № 79. P. 10954; https://doi.org/10.1039/C7CC06882D
- 5. Kampmeier J. A., Nalli T. W. // J. Org. Chem. 1994. V. 59. № 6. P. 1381; https://doi.org/10.1021/jo00085a030
- 6. Некипелова Т.Д.,Каспаров В.В., Коварский А.Л. и др. // Докл. АН. 2017. Т. 474. № 6. С. 707.
- 7. Некипелова Т. Д., Мотякин М. В., Каспаров В. В. и др. // Хим. физика. 2019. Т. 38. № 12. С. 19.
- 8. Потапов И. Д., Мотякин М. В., Некипелова Т. Д., Подругина Т. А. // Изв. АН. Сер. хим. 2024. T. 73. № 3. C. 523.
- 9. Villamena F.A. Reactive species detection in biology. From Fluorescence to Electron Paramagnetic Resonance Spectroscopy. Amsterdam: Elsevier, Science, 2016.
- 10. Davies M. J. // Methods. 2016. V. 109. P. 21; https://doi.org/10.1016/j.ymeth.2016.05.013
- 11. Janzen E. G., Coulter G. A., Oehler U. M. et al. // Can. J. Chem. 1982. V. 60. № 21. P. 2725; https://doi.org/10.1139/v82-392
- 12. Chumakova N. A., Lazhko A. E., Matveev M. V. et al. // Russ. J. Phys. Chem. B. 2023. V. 16. № 8. P. 1397; https://doi.org/10.1134/S1990793122080073
- 13. Ivanova T. A., Zubanova E. M., Popova A. A. et al. // Russ. J. Physical Chemistry B. 2022. V. 16. № 7. P. 1208; https://doi.org/10.1134/S1990793122070089
- 14. Ivanova T. A., Melnikov M. Ya., Timashev P. S. et al. // Russ. J. Phys. Chem. B. 2023. V. 17. № 2. P. 471; https://doi.org/10.1134/S1990793123020276
- 15. Popova A. A., Golubeva E. N. // Russ. J. Phys. Chem. B 2023. V. 17. № 7. P. 1540; https://doi.org/10.1134/S1990793123070187
- 16. Matveeva E. D., Podrugina T. A., Pavlova A. S. et al. // Eur. J. Org. Chem. 2009. V. 14. P. 2323; https://doi.org/10.1002/ejoc.200801251
- 17. Matveeva E. D., Vinogradov D. S., Podrugina T. A. et al. // Ibid. 2015. V. 33. P. 7324; https://doi.org/10.1002/ejoc.201500876
- 18. http://www.niehs.nih.gov/research/resources/software/toxpharm/tools/index.cfm
- 19. Levina I.I., Klimovich O.N., Vinogradov D.S. et al. // J. Phys. Org. Chem. 2018. V. 31. № 7. P. e3844.
- 20. Buettner G.R. // Free Radical Biol. Med. 1987. V. 3. P. 259.
- 21. Davies M. J., Slater T. F. // Chem.-Biol. Interact. 1986. V. 58. № 2. P. 137.
- 22. Sang H., Janzen E. G., Poyer J. L. et al. // Free Radical Biol. Med. 1997. V. 22. № 5. P. 843.
- 23. Brusa M.A., Di Iorio Y., Churio M.S. et al // J. Mol. Catal. A: Chem. 2007. V. 268. № 1-2. P. 29; https://doi.org/10.1016/j.molcata.2006.12.008
- 24. Calza P., Minero C., Pelizzetti E. // J. Chem. Soc. Faraday Trans. 1997. V. 93. № 21. P. 3765; https://doi.org/10.1039/A703867D
- 25. Calza P., Minero C., Pelizzetti E. // Environ. Sci. Technol. 1997. V. 31. № 8. P. 2198; https://doi.org/10.1021/es960660x
- 26. Romanczyk P. P., Kurek S. S. // Electrochim. Acta. 2020. V. 351. Р. 136404; https://doi.org/10.1016/j.electacta.2020.136404
- 27. Dektar J.L., Hacker N.P. // J. Org. Chem. 1990. V. 55. P. 639; https://doi.org/10.1021/jo00289a045
- 28. Bernofsky C., Bandara B.M.R., Hinojosa O. // Free Radical Biol. Med. 1990. V. 8. № 3. P. 231.
- 29. Stan S., Daeschel M.A. // J. Agric. Food Chem. 2005. V. 53. № 12. P. 4906; https://doi.org/10.1021/jf047918k
- 30. Aurich H.G., Schmidt M., Schwerzel Th. // Ber. 1985. V. 118. P. 1086.
- 31. Bandara B.M.R., Hinojosa O., Bernofsky C. // J. Org. Chem. 1992. V. 57. Р. 2652.
- 32. Sueishi Y., Miyake Y. // Bull. Chem. Soc. Jpn. 1997. V. 70. P. 397.
- 33. Sueishi Y., Nishihara Y. // J. Chem. Research (S). 2001. P. 84.
- 34. Noel-Duchesneau L., Lagadic El., Morlet-Savary F. et al. // Org. Lett. 2016. V. 18. P. 5900.
- 35. Chignell C.F., Motten A.G., Sik R.H. et al. // Photochem. Photobiol. 1994. V. 59. № 1. P. 5.
- 36. Hwang J.S., Tsonis C.P. // Polymer. 1981. V. 22. № 11. P. 1462.
- 37. Novakov C.P., Feierman D., Cederbaum A.I. et al. // Chem. Res. Toxicol. 2001. V. 14. № 9. P. 1239; https://doi.org/10.1021/tx015507h
- 38. Kunitake T., Murakami S. // J. Polym. Sci., Part A: Polym. Chem. 1974. V. 12. № 1. P. 67.
- 39. Candra H., Davidson I.M.T., Symons M.C.R. // J. Chem. Soc., Faraday Trans. 1. 1983. V. 79. № 11. P. 2705.
- 40. Pryor W.A., Nuggehalli S.K., Scherer K.V. et al. // Chem. Res. Toxicol. 1990. V. 3. P. 2.
- 41. Eberson L. // J. Chem. Soc., Perkin Trans. 2. 1992. № 10. P. 1807; https://doi.org/10.1039/P29920001807
